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Orden de llenado de los tubos para muestras sanguíneas con sistema de llenado al vacío

por | May 11, 2021 | Sin categoría

Dr. Luzmila Vargas

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Orden de llenado de los tubos para muestras sanguíneas con sistema de llenado al vacío

El sistema de extracción de sangre al vacío fue desarrollado en 1947 por Joseph Kleiner. Este consiste en extraer sangre venosa mediante el vacío que existe dentro de los tubos de recolección. Estos son tubos de vidrio o de plástico PET al vacío, con un tapón de plástico blando, que permite que lo...

El sistema de extracción de sangre al vacío fue desarrollado en 1947 por Joseph Kleiner. Este consiste en extraer sangre venosa mediante el vacío que existe dentro de los tubos de recolección. Estos son tubos de vidrio o de plástico PET al vacío, con un tapón de plástico blando, que permite que lo atraviese una aguja, mediante una leve presión. 

En 1990 la oficina de Administración de seguridad laboral y salud de Estados Unidos (OSHA por sus siglas en inglés) elaboró un estándar para establecer los métodos de seguridad que permitieran proteger a los funcionarios de posibles riesgos a su salud, derivados del contacto con sangre y otros fluidos corporales potencialmente infecciosos, y a la vez reducir el riesgo ante dicha exposición. 

El Clinical and Laboratory Estándar Institute (CLSI) diseñó un estándar para los tubos al vacío, dada su importancia en la toma de muestra (Guía H1-A5), en la que se describen el tipo de materia prima, características de los tubos, anticoagulantes utilizados y dimensiones, entre otros. 

En los últimos 20 años se han producido dos cambios importantes en la conformación de los tubos al vacío:

  1. La incorporación de un gel de polímero en la parte inferior de los tubos de recolección para separar el suero de los componentes celulares de la sangre
  2. La sustitución del vidrio por plástico como componente primario de los tubos

Estos cambios han traído una serie de ventajas operativas prácticas, tales como:

  • Reducción del tiempo de centrifugación
  • Mayor estabilidad de la muestra en los tubos de recolección
  • Al disminuir el peso del tubo se reduce el riesgo de ruptura, así como los riesgos para el personal que debe manipular tales tubos.
  • Estos tubos tienen múltiples aditivos que contribuyen a la separación optima de suero o plasma para los análisis de laboratorio.

Los tubos plásticos requieren adición de partículas de Sílice que sirven para activar el proceso de coagulación. La pared interior del tubo está recubierta de tensioactivos para evitar la adherencia de la sangre a la pared y por tanto la hemólisis de la muestra.

Los colores de las tapas de los tubos corresponden a las recomendaciones de la ISO 6710 (Internacional Standard Organization), para lograr una armonización en tales colores y de esta manera evitar errores y garantizar la seguridad del paciente.

¿Cuáles tipos de tubos hay?

Esto depende del tipo de aditivo que los tubos contienen:

  • Tubos sin aditivos: pueden ser de vidrio o de plástico. Se pueden utilizar para análisis bioquímicos, determinación de hierro o para serología.
  • Los tubos pueden contener sustancias agregadas para preservar la muestra en el laboratorio clínico. Las sustancias agregadas pueden ser aceleradores de la coagulación o anticoagulantes, como EDTA K2, Citrato de sodio, Heparina de litio entre otros. 

Orden de llenado

Existe un orden de llenado recomendado tanto por la OMS en el Manual para flebotomía, como el CLSI en su guía GP41.  El propósito es evitar la contaminación de los tubos recolectores de muestra con aditivos de tubos anteriores. A continuación, se presenta la indicación para muestras de sangre venosa:

Una vez tomada la muestra se debe mezclar la sangre con el aditivo del tubo, en forma cuidadosa, invirtiendo suavemente el tubo 180º, inmediatamente después de llenarlo, repitiendo esta operación hasta 8 veces.

En la toma de muestras de sangre capilar no se puede incluir tubo tapa celeste puesto que las pruebas de coagulación resultan alteradas, es decir que se deben tomar exclusivamente por sistema al vacío o con jeringa. El orden para la toma de muestras capilares es:

gunos problemas que pueden surgir cuando no se sigue el orden recomendado son: 

  • Falsa elevación del sodio por causa del Citrato de sodio
  • Falsa elevación del potasio por el EDTA K2, adicionado por el anticoagulante de los tubos tapa lila.
  • Falsa disminución del calcio, debido a que el potasio del EDTA K2 puede quelar este ion y también el Magnesio, el Zinc y el Hierro. 
  • La fosfatasa alcalina es una enzima que también puede ser disminuida por acción de este EDTA K2.
  • Las pruebas de coagulación también se pueden ver alteradas por adición de anticoagulantes arrastrados desde un tubo anterior.

Un error preanalítico de gran relevancia consiste en no respetar el nivel de llenado, que está predeterminado por el fabricante, con lo que se altera la relación entre la sangre y el anticoagulante.

 La duración de la aplicación del torniquete no debe exceder 1 minuto, ya que se produce un éxtasis local con hemoconcentración. Esto puede dar lugar a resultados erróneos:  

  • Concentraciones elevadas de parámetros proteicos. 
  • Hematocrito elevado. 
  • Trombocitopenias. 
  • Hemólisis.

Bibliografía

CLSI GP41: Collection of Diagnostic Venous Blood Specimens – 7th Ed., 2017.

WHO guidelines on drawing blood: best practices in phlebotomy. World Health Organization 2010. http://www.euro.who.int/__data/assets/pdf_file/0005/268790/WHO-guidelines-on-drawing-blood-best-practices-in-phlebotomy-Eng.pdf?ua-1] [Consulta: 7/05/2021]

 Simundic et al. Joint EFLM – COLABIOCLI recommendation for venous blood sampling. Clin Chem Lab Med 2018: 56(12): 2015-2038

 

por | May 11, 2021 | Sin categoría

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